基本原理:
在長(zhǎng)期的細(xì)胞培養(yǎng)過(guò)程中可能會(huì)出現(xiàn)微生物污染或基因型改變等情況,會(huì)導(dǎo)致具有優(yōu)良特性細(xì)胞系的丟失。為防止這些細(xì)胞的丟失,細(xì)胞可以經(jīng)快速冷凍并幾乎無(wú)限期保存在非常低的溫度下,如液氮(-176℃)。
試劑和設(shè)備:
冷凍液: 90%滅活血清+10%DMSO(或甘油),用0.45μm微孔濾膜過(guò)濾除菌,4℃保存;
培養(yǎng)液;
臺(tái)盼藍(lán)溶液(0.4%溶解于PBS);
70%乙醇;
組織培養(yǎng)瓶;
15-50 ml 無(wú)菌圓錐底離心試管;
離心機(jī);
血球計(jì)數(shù)板;
超凈工作臺(tái);
光學(xué)顯微鏡;
37℃水浴;
冷凍管;
-80℃冰箱;
液氮和液氮容器。
操作步驟:
(一)冷凍細(xì)胞
1.收集對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期細(xì)胞;
2.以25μl臺(tái)盼藍(lán)溶液稀釋25μl細(xì)胞懸液;用血球計(jì)數(shù)板計(jì)數(shù)并計(jì)算細(xì)胞存活率(至少應(yīng)該在90%以上);
3.細(xì)胞懸液在4℃ 條件下200磄離心10分鐘;
4.將沉淀的細(xì)胞重新懸浮在冷凍液中(大約5?06細(xì)胞/0.5 ml 冷凍液);
5.將細(xì)胞懸液加入到冷凍管中,每管0.5 ml;
6.將冷凍管置于-80℃冰箱中;
7.24小時(shí)后,將冷凍管移入液氮罐中;
8.在記錄本或電腦中記錄下每一個(gè)冷凍管的位置以確保在以后應(yīng)用時(shí)能夠找到每一個(gè)冷凍管。
(二)細(xì)胞復(fù)蘇
1.將冷凍管迅速由液氮轉(zhuǎn)入到37℃水浴中,冷凍管的頂部保持在水面以上以避免任何污染,不定時(shí)攪拌加速解凍;
2.當(dāng)細(xì)胞*解凍后,用含70%乙醇的紗布擦拭冷凍管消毒;
3.將解凍后細(xì)胞轉(zhuǎn)移到含4℃預(yù)平衡培養(yǎng)液的試管中;
4.細(xì)胞懸液在4℃下200磄離心10分鐘;
5.棄上清,將細(xì)胞重新懸浮在新鮮培養(yǎng)液中;
6.將細(xì)胞轉(zhuǎn)移到細(xì)胞培養(yǎng)瓶,CO2孵箱中培養(yǎng);
7.是用倒置顯微鏡檢查細(xì)胞存活率以及細(xì)胞密度,如果細(xì)胞密度過(guò)高,用培養(yǎng)液稀釋至適宜濃度。
對(duì)照試驗(yàn)
在冷凍細(xì)胞被移入到液氮罐中一段時(shí)間后,取出一管細(xì)胞復(fù)蘇并進(jìn)行培養(yǎng)以檢測(cè)存活率。
實(shí)驗(yàn)要點(diǎn)及說(shuō)明:
1.嚴(yán)格遵守液氮操作規(guī)則(即戴上合適的手套和護(hù)目鏡),液態(tài)氮對(duì)眼睛極為有害;
2.對(duì)一瓶細(xì)胞培養(yǎng)液要盡可能多分裝幾個(gè)冷凍管;
3.延長(zhǎng)暴露在DMSO中的時(shí)間對(duì)細(xì)胞有害,因此冷凍和解凍操作要盡可能快;
4.細(xì)胞可以暫時(shí)穩(wěn)定保存在-80 ℃達(dá)數(shù)月;
5.每批次冷凍和復(fù)蘇的細(xì)胞的存活率可能會(huì)不相同,為避免這個(gè)問(wèn)題,每次細(xì)胞凍存分兩批以上進(jìn)行;
6.DMSO可以防止在細(xì)胞內(nèi)部出現(xiàn)冰結(jié)晶,凍存過(guò)程需要逐步降低溫度;
7.如果復(fù)蘇后細(xì)胞難以恢復(fù)到良好狀態(tài),可以使用含10%鼠胚胎成纖維母細(xì)胞培養(yǎng)上清的培養(yǎng)液以促進(jìn)恢復(fù);
8.也可以用含20%熱滅活胎牛血清和10%DMSO的培養(yǎng)液為冷凍液。